Инфекционный бронхит кур: патогенность и контроль

ИБК распространён во всех странах с промышленным птицеводством и наносит значительный экономический ущерб: снижение яйценоскости у несушек достигает 50–70%, у бройлеров ухудшаются привесы и конверсия корма, смертность цыплят до 30-дневного возраста может достигать 30%, а при хроническом течении с бактериальными осложнениями выбраковка доходит до 60% (Schalk & Hawn, 1931; Abozeid, 2023; Quinteros et al., 2022; Jordan, 2024; Swayne et al., 2013; Horváth-Papp, 2013).

Возбудитель – РНК-содержащий вирус семейства Coronaviridae, рода Gammacoronavirus (IBV). Вирус поражает преимущественно кур, но также обнаруживался у фазанов и павлинов. Существует множество серотипов и вариантов, основные из которых представлены в таблице (Jordan, 2024; Swayne et al., 2013; Horváth-Papp, 2013).

Таблица 1. Серотипы и варианты ИБК

Разные серотипы не дают перекрёстной защиты, что серьёзно затрудняет контроль заболевания. В России с 1998 года регистрируют штаммы групп 793/B и D274, с 2001 – Italia-02 и QX (Bande et al., 2016; Каспарьянц, 2012).

Вирус передаётся воздушно-капельным путём, через заражённые корм и воду, а также через оборудование и одежду персонала. Инкубационный период 24-48 часов, пик выделения вируса из дыхательных путей приходится на 3-5-й день после заражения. Инфицированные куры могут выделять возбудитель с перерывами до 20 недель. Заболеваемость в стаде достигает 100%, а смертность 20-30%. Исследования, проведённые в Иордании, показали, что даже в стадах, вакцинированных против M-41, уязвимость к полевым штаммам 4/91 достигает 90%, а к D274 – 61,4%. В стадах с респираторными симптомами ПЦР выявляет вирус у 64% бройлеров, 53% несушек и 54,5% родительских стад. Тяжесть болезни зависит от штамма, возраста, иммунного статуса, условий содержания (вентиляция, температура, уровень аммиака) (Jordan, 2024; Roussan et al., 2009; Horváth-Papp, 2013).

ИБК редко протекает как моноинфекция. Вирус повреждает эпителий дыхательных путей, открывая ворота для вторичной микрофлоры — как бактериальной, так и грибковой.

Наиболее значимые вторичные заболевания:

• микоплазмоз – из 58 групп, положительных по патогенным микоплазмам, у 43,10% выявлена одновременная инфекция ИБК (Yadav et al., 2023);
• колибактериоз – E. coli является одним из наиболее частых вторичных патогенов;
• орнитобактериоз (ORT) – Ornithobacterium rhinotracheale также может выступать вторичным патогеном на фоне ИБК;
• риемерелла (Riemerella anatipestifer) – коинфекция с ИБК усиливает её патогенность, вызывая обструкцию яйцевода и снижение яйценоскости (Yadav et al., 2023; Qin & Lv, 2026);
• аспергиллез (Aspergillus fumigatus) – грибковая инфекция, развивающаяся на фоне повреждения эпителия дыхательных путей вирусом ИБК и ослабления местного иммунитета;
• болезнь Ньюкасла (NDV) – смешанная инфекция с ИБК может усиливать респираторные поражения и увеличивать летальность (Al-Azawy & Al-Ajeeli, 2019; Merck Veterinary Manual, 2024).

Патогенез, клинические признаки и патологоанатомические изменения

Вирус проникает через дыхательные пути и конъюнктиву, реплицируется в эпителии трахеи и бронхов, вызывая потерю реснитчатого эпителия и застой слизи. Это открывает ворота для вторичных бактериальных инфекций. Затем вирус распространяется с кровью, поражая органы в зависимости от тропизма штамма: респираторный тракт, почки, яйцевод, кишечник. Штаммы, тропные к дыхательным путям (QX, 4/91, B1648), вызывают воспаление почек с закупоркой мочеточников уратами и почечной недостаточностью. Репродуктивные штаммы поражают яйцевод, вызывая некроз и рубцевание слизистой. Иммунный ответ сопровождается повышением провоспалительных цитокинов (IFN-α, IL-1β, IL-6), что усиливает повреждение тканей (Bande et al., 2016; Jordan, 2024; Swayne et al., 2013; Horváth-Papp, 2013).

Клинические признаки у ремонтного молодняка и кур-несушек зависят от возраста заражения. При заражении с 1-го по 20-й день возникают респираторные признаки и синдром «ложной» несушки – птица выглядит нормально, но не несётся из-за кистозного поражения яйцевода. У птиц, заражённых в 3 или 7 дней, частота кист яйцевода выше, а наиболее тяжёлые гистологические поражения отмечены при заражении в 3 дня (Mueller Slay et al., 2022; Swayne et al., 2013; Horváth-Papp, 2013). При заражении с 3-й по 18-ю неделю наблюдают неспецифические респираторные признаки. При заражении в период яйцекладки – снижение яйценоскости и качества яиц (Novosheshminsk, 2026; MSD Veterinary Manual, 2024).

Если куры-несушки переболевают ИБК в возрасте до 3 недель, снижение яйценоскости во взрослом состоянии может достигать 30-65% из-за изменений в репродуктивном тракте. При заболевании в начале яйцекладки яйценоскость снижается на 10-15% с восстановлением в течение 30 дней. В период максимальной яйцекладки – на 20-30% на протяжении 30-35 дней. Если ИБК возникает в период естественного снижения яйценоскости, яйцекладка может полностью прекратиться на 20-30 дней (Roussan et al., 2009).

Куры, поражённые ИБК, несут яйца с деформированной скорлупой – шероховатые, волнистые, сильно удлинённые, часто в виде «солнышка», с водянистым белком. Выводимость цыплят из таких яиц снижается на 8-10%. При вскрытии у взрослых кур обнаруживают атрофию яйцевых фолликулов, недоразвитие яичников и яйцеводов, кисты в яйцеводе, кровоизлияния в яичниках. У 20-25% переболевших в раннем возрасте кур – недоразвитие яйцевода (Mueller Slay et al., 2022; Roussan et al., 2009).

Помимо поражений у взрослой птицы, вирус ИБК вызывает характерные деформации у эмбрионов и цыплят. При заражении куриных эмбрионов вирус индуцирует карликовость, скручивание, отставание в развитии и отложение уратов (Ahmed et al., 2007). Инфицированные эмбрионы демонстрируют уменьшение размеров, искривление тела, гиперемию (Key Aspects of Coronavirus Avian Infectious Bronchitis Virus, 2023). Эти признаки используются как биологический маркер для идентификации вируса при выделении на эмбрионах. У вылупившихся цыплят, перенёсших инфекцию в эмбриональном периоде или в первые дни жизни, могут наблюдаться отставание в росте, слабость и повышенная восприимчивость к вторичным инфекциям. Цыплята, выведенные из яиц от переболевших кур, обладают пассивным иммунитетом, который сохраняется 2–3 недели (MSD Veterinary Manual, 2024).

При вскрытии павшей птицы обнаруживаются характерные изменения:

• в дыхательной системе: серозный, катаральный или творожистый экссудат в трахее и бронхах, гиперемия, отёк слизистой;
• в почках: увеличение, бледность, «мраморный» рисунок, ураты в мочеточниках;
• в репродуктивной системе: атрофия фолликулов, недоразвитие яйцевода.

При хроническом течении и бактериальных осложнениях – аэросаккулит, перикардит, перигепатит (Jordan, 2024; Bande et al., 2016; Swayne et al., 2013; Horváth-Papp, 2013).

Диагностика

Диагноз устанавливают на основании анализа эпизоотической ситуации, клинических признаков, патологоанатомических изменений при вскрытии и лабораторных тестов. Лабораторные методы включают серологические исследования (ИФА, РТГА) для выявления антител, молекулярные методы (ОТ-ПЦР, секвенирование S-гена) для обнаружения РНК вируса и типирования штаммов, а также выделение вируса на куриных эмбрионах. Материал для исследования: смывы из трахеи, гортани, кусочки лёгких, почек. Дифференциальная диагностика исключает микоплазмоз, инфекционный ларинготрахеит и болезнь Ньюкасла (Jordan, 2024; Bande et al., 2016; Swayne et al., 2013; Horváth-Papp, 2013).

Способы контроля

В условиях ограничения использования кормовых антибиотиков приоритет отдаётся альтернативным стратегиям, направленным на повышение естественной резистентности организма. Для профилактики инфекционного бронхита и поддержки дыхательной системы птицы рекомендуются специализированные кормовые добавки.

Мисма ML (монолаурин) – альфа-монолаурин, активный против вирусов с липидной оболочкой, включая коронавирусы. Применяется для профилактики респираторных инфекций, в том числе инфекционного бронхита.
Дозировка: 300-500 г/т корма.

МеноХерб (тимол, карвакрол, эвгенол, коричный альдегид) – фитобиотик с антибактериальным, противовоспалительным и антиоксидантным действием, поддерживает общий статус птицы.
Дозировка: 150 г/т корма.

Мисмацид – подкислитель на основе формиата кальция, пропионата кальция – 18-22%, лимонной кислоты, фумаровой кислоты и сорбиновой кислоты. Снижает риск вторичных бактериальных инфекций, утяжеляющих течение ИБК, и повышает титры антител после вакцинации.
Дозировка: 1-3 кг/т корма.

Мисма БутиПро Л - источник α-моноглицеридов масляной (монобутирин) и пропионовой кислоты (монопропионин), являющихся сильными антибактериальными агентами с направленным действием на грам- бактерии, в т.ч. сальмонеллу и кишечную палочку.
Дозировка: 1 л/т воды.

Комбинация этих средств обеспечивает комплексную поддержку: снижение вирусной нагрузки (Мисма ML), подавление вторичной бактериальной микрофлоры (Мисмацид), (Мисма БутиПро Л) и поддержку общего иммунного статуса птицы (МеноХерб).

Статья подготовлена Техническим отделом МИСМА, сентябрь 2026.
Перепечатка и частичное использование материала только с письменного разрешения компании МИСМА.

Список использованной литературы

1. Schalk, A. F. An Apparently New Respiratory Disease of Baby Chicks / A. F. Schalk, M. C. Hawn // Journal of the American Veterinary Medical Association. – 1931. – Vol. 78. – P. 413–423.
2. Infectious Bronchitis in Chickens // Merck Veterinary Manual. – 2024.
3. Bande, F. Pathogenesis and Diagnostic Approaches of Avian Infectious Bronchitis / F. Bande, S. S. Arshad, A. R. Omar, M. H. Bejo, M. S. Abubakar, Y. Abba // Advances in Virology. – 2016. – Vol. 2016. – Article ID 4621659.
4. Каспарьянц, С. А. Применение вакцины Пулвак IB Праймер для профилактики инфекционного бронхита кур в промышленном птицеводстве : автореф. дис. … канд. вет. наук / С. А. Каспарьянц. – Москва, 2012. – 24 с.
5. Roussan, D. A. Infectious bronchitis virus in Jordanian chickens: seroprevalence and detection / D. A. Roussan, G. Y. Khawaldeh, I. A. Shaheen // Canadian Veterinary Journal. – 2009. – Vol. 50, № 1. – P. 77–80.
6. Abozeid, H. H. Global Emergence of Infectious Bronchitis Virus Variants: Evolution, Immunity, and Vaccination Challenges / H. H. Abozeid // Transboundary and Emerging Diseases. – 2023. – Vol. 2023. – Article ID 1144924.
7. Quinteros, J. A. Genomics and pathogenesis of the avian coronavirus infectious bronchitis virus / J. A. Quinteros, A. H. Noormohammadi, S. W. Lee, G. F. Browning, A. Diaz-Méndez // Australian Veterinary Journal. – 2022. – Vol. 100, № 10. – P. 496–512.
8. Yadav, J. P. Molecular detection of respiratory avian mycoplasmosis associated bacterial and viral concurrent infections in the poultry flocks / J. P. Yadav, Y. Singh, K. Batra, S. K. Khurana, N. K. Mahajan, N. Jindal // Animal Biotechnology. – 2023. – Vol. 34, № 4. – P. 1474–1482.
9. Mueller Slay, A. Infection with IBV DMV/1639 at a Young Age Leads to Increased Incidence of Cystic Oviduct Formation Associated with False Layer Syndrome / A. Mueller Slay, M. Franca, M. Jackwood, B. Jordan // Viruses. – 2022. – Vol. 14, № 5. – Art. 852.
10. False Laying in Poultry // MSD Veterinary Manual. – 2024.
11. Fertőző bronchitis felismerése és megelőzése // Magyar Mezőgazdaság. – 2024. – Október 28.
12. Инфекционный бронхит кур // Новошешминское государственное ветеринарное объединение. – 2026. – 15 февраля.
13. Ahmed, Z. Quantification of Teratological Effects of Infectious Bronchitis Virus Isolated from Commercial Poultry in Pakistan / Z. Ahmed, A. Hameed, K. Naeem // International Journal of Poultry Science. – 2007. – Vol. 6, № 12. – P. 866–870.
14. Key Aspects of Coronavirus Avian Infectious Bronchitis Virus // Pathogens. – 2023. – Vol. 12, № 5. – Art. 698.
15. Qin, Z. Coinfection with infectious bronchitis virus exacerbates the pathogenicity of Riemerella anatipestifer in chickens / Z. Qin, J. Lv // Frontiers in Veterinary Science. – 2026. – Vol. 13. – Art. 1551365.
16. Al-Azawy, A. K. The effect of Aspergillus fumigatus infection on antibody immune response to Newcastle disease virus in broiler chickens / A. K. Al-Azawy, K. S. Al-Ajeeli // Journal of World's Poultry Research. – 2019. – Vol. 9, № 4. – P. 196–203.
17. Diseases of Poultry / ed.-in-chief D. E. Swayne ; assoc. ed. J. R. Glisson [et al.]. – 13th ed. – Ames, Iowa : Wiley-Blackwell, 2013. – 1408 p. – ISBN 978-1-118-71973-2.
18. Horváth-Papp, I. Broiler Diseases : The Comprehensive Guide for Veterinarians and Producers : in 2 vol. / I. Horváth-Papp. – [Б. м.] : Imre Horvath-Papp, 2013.ISBN 9786150266145.