Ornithobacterium rhinotracheale - грамотрицательная полиморфная палочковидная бактерия, не образующая спор и не обладающая подвижностью. Относится к семейству Flavobacteriaceae, является факультативно-анаэробным микроорганизмом. Возбудитель был впервые выделен в 1981 году в Германии от индюшат с респираторными симптомами. Однако его роль в патологии промышленного птицеводства долгое время недооценивалась. Сегодня Ornithobacterium rhinotracheale признан одной из значимых респираторных инфекций бройлерных хозяйств. Возбудитель классифицируют по серотипам. По современным данным идентифицированы 18 различных серотипов, обозначенных буквами от A до R (Thieme et al., 2016; Horváth-Papp, 2013); в более раннем обзоре van Empel & Hafez (1999).
Таблица. Серотипы Ornithobacterium rhinotracheale и их характеристика
| Серотип | Основное распространение | Заболевания птиц | Характеристика поражений |
| A | Куры, бройлеры, индейки | Орнитобактериоз, респираторный синдром | Наиболее распространённый у бройлеров. Поражение синусов, трахеи, воздушных мешков, пневмония. Низкая адгезия к трахеальному эпителию |
| B | Индейки, куры | Респираторные и системные поражения | Часто в ассоциации с другими патогенами. Низкая адгезия к трахеальному эпителию |
| C | Индейки, куры | Респираторные поражения | Высокая адгезия к трахеальному эпителию, диффузный характер адгезии |
| D | Индейки, куры | Респираторные поражения | Высокая адгезия к трахеальному эпителию, агрегированный характер адгезии |
| E | Индейки, куры | Респираторные поражения | Высокая адгезия к трахеальному эпителию, диффузный характер адгезии |
| F–R | Различные виды птиц | Респираторные и системные поражения | Данные ограничены. Серотипы F и K не были обнаружены в некоторых исследованиях |
Серотип А - наиболее патогенный и значимый для бройлеров. Подавляющее большинство случаев орнитобактериоза у птицы мясного направления связано именно с этим типом. Несмотря на низкую адгезию к трахеальному эпителию, он обладает высокой вирулентностью, что объясняется другими факторами патогенности. Остальные разновидности Ornithobacterium rhinotracheale не играют важной роли в патологии бройлеров (De Haro-Cruz et al., 2013; Peña-Vargas et al., 2016; Numee et al., 2012; Zaini Mohd-Zain et al., 2008; Horváth-Papp, 2013).
Патогенез у бройлеров
Источником инфекции служит больная и переболевшая птица. Передача возбудителя происходит преимущественно аэрогенным путём, а также через контаминированную воду, корм, предметы ухода и подстилку. Передача через яйцо отсутствует, поскольку Ornithobacterium rhinotracheale вызывает гибель эмбрионов. Серотип А доказанно является первичным патогеном для бройлеров: в экспериментальных условиях бактерия способна вызывать поражения после аэрозольного заражения без предварительного инфицирования вирусом (Chin et al., 2008; Horváth-Papp, 2013).
Попав в респираторный тракт, возбудитель колонизирует эпителий синусов, трахеи и воздушных мешков. Несмотря на низкую адгезию серотипа А к трахеальному эпителию, бактерия способна противостоять защитным механизмам дыхательных путей и размножаться в слизистой оболочке. Факторы вирулентности Ornithobacterium rhinotracheale повреждают эпителиальные клетки, что запускает каскад воспалительных реакций: развиваются отёк, гиперемия и экссудация. Воспалительный процесс быстро распространяется на подлежащие ткани, приводя к фибринозно-гнойному поражению синусов, трахеиту, воспалению воздушных мешков и пневмонии. У части птиц возбудитель может диссеминировать, вызывая системную инфекцию с поражением печени и суставов (Chin et al., 2008; Horváth-Papp, 2013).
У бройлеров заболевание чаще проявляется в возрасте 24–30 дней (3–5 недель). Заболеваемость может достигать 20–50% стада. Болезнь длится 5–7 дней. Смертность колеблется от 2 до 50% в зависимости от вирулентности возбудителя и сопутствующих инфекций. Существует две формы заболевания. При субклинической форме стадо растёт неравномерно, снижается продуктивность, птица угнетена, оперение загрязнено. При клинической - депрессия, потеря аппетита, взъерошенные грязные перья, диарея, внезапная смерть. Ранние признаки (выделения из носа, чихание, увлажнение глаз, небольшой рост смертности) часто не замечают. Характерный признак - отёк и опухание подглазничных синусов «совиная голова». Повреждения обнаруживаются в околоносовых пазухах, трахее, воздушных мешках, реже в лёгких, печени и суставах. Через 10–14 дней после первых симптомов может развиться воспаление сухожилий и мышц голени, суставов лап (Chin et al., 2008; Horváth-Papp, 2013).
Диагностика
Клинические признаки орнитобактериоза неспецифичны, поэтому диагноз только по внешнему виду птицы невозможен. Диагноз ставят комплексно: учитывают историю хозяйства, кривую смертности и изменения при вскрытии. Для подтверждения применяют ПЦР, в том числе количественную ПЦР в реальном времени. Однако обнаружение бактерии в дыхательных путях не всегда означает заболевание - возбудитель может сохраняться у клинически здоровой птицы. Классический признак при вскрытии - фибринозный экссудат в воздухоносных мешках (Numee et al., 2012; Thieme et al., 2016; Chin et al., 2008; Horváth-Papp, 2013).
Серотип возбудителя определяют реакцией агглютинации со стандартными сыворотками. Ложные реакции, особенно между серотипом А и серотипами I, H и J, затрудняют идентификацию. Молекулярные методы (секвенирование 16S rRNA или гена Or01) не заменяют реакцию агглютинации, поскольку чёткой связи между этими генами и серотипом не выявлено (Thieme et al., 2016; Horváth-Papp, 2013).
Способы контроля
Падёж часто наступает внезапно. Эффективный контроль Ornithobacterium rhinotracheale невозможен без комплексного подхода: контроля вирусных инфекций, оптимизации микроклимата и стабилизации общего статуса птицы (Chin et al., 2008; Horváth-Papp, 2013).
Для профилактики орнитобактериоза и поддержания здоровья респираторной системы птицы рекомендуются специализированные решения МИСМА.
- МеноХерб: фитобиотик (тимол, карвакрол, эвгенол, коричный альдегид). Обладает антибактериальным, противовоспалительным и антиоксидантным действием, улучшает продуктивность. Разрушает оболочку бактерий и нарушает их обмен веществ, мешает образованию биоплёнок. Эффективность компонентов фитобиотика против Ornithobacterium rhinotracheale подтверждена в исследованиях (Erfan & Marouf, 2019; Van et al., 2022). Дозировка: 150 г/т корма.
- Мисмацид: комплексный подкислитель на основе синергетической композиции органических кислот (муравьиная, молочная, лимонная, фумаровая). Чувствительность Ornithobacterium rhinotracheale к органическим кислотам подтверждена in vitro (Hafez & Schulze, 2003). Продукт эффективен как в желудке, так и в кишечнике, подавляет развитие патогенов (Salmonella, E. coli, Clostridia) и стимулирует рост полезных лактобактерий. Рекомендуемая дозировка: 1–3 кг/т корма.
- Мисма Бути Про Л: кормовая добавка в жидкой форме на основе монобутирата и монопропионата. Действующие вещества продукта обладают способностью всасываться и системно циркулировать в организме, достигая органов дыхательной системы. Поскольку Ornithobacterium rhinotracheale является грамотрицательной бактерией, применение продукта физиологически обосновано: монобутират и монопропионат проявляют активность в отношении грамотрицательной микрофлоры, способствуя снижению бактериальной нагрузки и поддержанию здоровья респираторного тракта. Рекомендуемая дозировка: 1 кг/т воды.
- Мисма ML: кормовая добавка на основе альфа-монолаурина. Обладает прямым бактерицидным действием, активен против грамположительных бактерий и вирусов с липидной оболочкой. В отношении грамотрицательных бактерий, включая Ornithobacterium rhinotracheale, данных о прямом бактерицидном действии ограничено, поэтому продукт применяется в комбинации с органическими кислотами и фитобиотиками. Рекомендуемая дозировка: 0,3–2 кг/т корма.
Статья подготовлена техническим отделом МИСМА, ноябрь 2026.
Перепечатка и частичное использование материала только с письменного разрешения компании МИСМА.
Источники
Van Empel, P. C. M., & Hafez, H. M. (1999). Ornithobacterium rhinotracheale: a review. Avian Pathology, 28(3), 217–227.
Numee, S., Hauck, R., & Hafez, H. M. (2012). Detection and Typing of Ornithobacterium rhinotracheale from German Poultry Flocks. Avian Diseases, 56(4), 654–658.
De Haro-Cruz, M. J., Ixta-Avila, L., & Guerra-Infante, F. M. (2013). Adherence of five serovars of Ornithobacterium rhinotracheale to chicken tracheal epithelial cells. British Poultry Science, 54(4), 425–429.
Thieme, S., Mühldorfer, K., Lüschow, D., & Hafez, H. M. (2016). Molecular Characterization of the Recently Emerged Poultry Pathogen Ornithobacterium rhinotracheale by Multilocus Sequence Typing. PLoS ONE, 11(2), e0148158.
Chin, R. P., van Empel, P. C. M., & Hafez, H. M. (2008). Ornithobacterium rhinotracheale infection. In: Diseases of Poultry, 12th ed. Iowa State University Press.
Peña-Vargas, E. R., et al. (2016). Serotyping, Genotyping, and Antimicrobial Susceptibility of Ornithobacterium rhinotracheale Isolates from Mexico. Avian Diseases, 60(3), 669–672.
Zaini Mohd-Zain, Tan Lin Jee, & Kamaruzaman Jusoff. (2008). A Preliminary Investigation on the Phenotypic Characteristics of Ornithobacterium rhinotracheale. WSEAS Transactions on Biology and Biomedicine.
Hafez, H. M., & Schulze, D. (2003). Examinations on the efficacy of chemical disinfectants on Ornithobacterium rhinotracheale in vitro. Archiv für Geflügelkunde, 67(4), 153–156.
Horváth-Papp, I. (2013). Broiler Diseases: The Comprehensive Guide for Veterinarians and Producers (Vols. 1–2). Imre Horvath-Papp. ISBN 9786150266145.
Erfan, A. M., & Marouf, S. (2019). Cinnamon oil: a potential alternative for the control of Ornithobacterium rhinotracheale infection in chickens. Veterinary World, 12(5), 690–695.
Van, T. T., et al. (2022). In vitro antibacterial activity of some essential oils against Ornithobacterium rhinotracheale. Veterinary Sciences, 9(4), 180.
